发布网友 发布时间:2024-10-04 06:26
共1个回答
热心网友 时间:2024-10-04 12:43
首先,将5×104至10×104个WEHI-164细胞接种到96孔细胞培养板的每个孔中,培养液为含10%小牛血清的RPMI-1640,置于37℃和5% CO2的恒温培养箱中,让细胞贴附在底部,培养时间约2-3小时。
接着,使用RPMI-1640进行TNF标准品的10倍梯度稀释,根据需要对待测样品进行3-5倍稀释。每个孔加入0.1毫升的稀释标准品或样品,每个稀释度需有3个重复孔。对照设置为6孔,其中3孔加4μg TNF的RPMI-1640作为阳性对照,3孔加100μl RPMI-1640作为阴性对照。继续培养18-24小时后,移除培养液,用PBS进行一次轻柔洗涤,然后每孔加入0.1毫升10%甲醇溶液固定细胞30秒。
吸去甲醇后,每个孔加入0.1毫升结晶紫染液,在室温下静置20分钟。轻轻甩去染液,用蒸馏水清洗,将培养板放置在吸水纸上吸干水分,或在37℃下烘干。实验板可长期在室温下保存以备后续测定。
在测定前,每个孔添加0.1毫升33%醋酸脱色,充分振荡后,测量570nm处的光吸收度。通过绘制样品稀释度与光吸收度的关系图,比较标准品曲线与待测样品曲线,以此来评估待测样品中细胞因子的活性水平。