双缩脲法测定蛋白质的含量实验分析与讨论怎么写?

发布网友发布时间：2022-04-26 23:24

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热心网友时间：2022-06-20 01:40

双缩脲法测定蛋白质含量的干扰因素有哪些：

双缩脲法测定蛋白质含量的干扰因素有三羟甲基氨基甲烷、一些氨基酸和EDTA。

双缩脲法是一个用于鉴定蛋白质的分析方法。双缩脲试剂是一个碱性的含铜试液，呈蓝色，由1%氢氧化钾、几滴1%硫酸铜和酒石酸钾钠配制。当底物中含有肽键时，试液中的铜与多肽配位，配合物呈紫色。可通过比色法分析浓度，在紫外可见光谱中的波长为540nm。鉴定反应的灵敏度为5~160mg/ml。

双缩脲法测定蛋白质含量需注意哪些问题

在使用双缩脲试剂时候，必须注意，必须是先加0.1 g/mL氢氧化钠溶液，再加0.01 g/mL硫酸铜的水溶液。(若先加入硫酸铜[CuSO4]溶液，再加入氢氧化钠[NaOH]溶液，则无法充分制造碱性环境，此时CuSO4会与NaOH发生复分解反应，生成蓝色氢氧化铜[Cu(OH)2]沉淀，导致现象不清，无法较好地达到实验目的。

另外，能与双缩脲试剂发生紫色反应的化合物分子中至少含有两个肽键。因此，二肽无法用它来检验。

热心网友时间：2022-06-20 01:40

双缩脲法测定蛋白质含量的干扰因素有三羟甲基氨基甲烷、一些氨基酸和EDTA。

实验一:双缩脲法测定蛋白质含量

一目的掌握双缩脲法测定蛋白质含量的原理及方法。二原理

双缩脲( )是两分子尿素经180℃左右加热,放出一分子氨( NH3)后得到的产物。在强碱溶液中，双缩脲与CUSO4形成紫色络合物，称为双缩脲反应。其原因是含有两个及以上肽键或类似肽键有化合物都具有类似双缩脲反应。蛋白质含有多个

肽键，在碱性溶液中能与CU络合成紫红色的络合物。其颜色的深浅与被测样品中蛋白质浓度呈正比，而与蛋白质分子量和氨基酸成分无关，故可用来测定蛋白质含量。该法对样品中蛋白质含量要求相对较高，一般在1—10mg/L蛋白质。tris（三甲羟基氨基甲烷）、一些氨基酸、EDTA（乙二胺四乙酸）、草二酰胺、多肽等会于扰该测定。

在一定浓度范围内，反应后颜色与被测样品蛋白质含量呈线性关系，即蛋白质浓度越高，体系的颜色越深。反应产物在540nm处有最大吸收峰（吸光度）。

将未知浓度的样品溶液与一系列已知浓度的标准蛋白质溶液同时与双缩脲试剂反应，并在540nm处比色，可通过标准浓度蛋白质绘制的标准曲线，求得未知样品中的蛋白质含量（浓度）。

由于本法操作简便、迅速、蛋白质浓度与光密度的线性关系好，故对蛋白质快速而不需要十分精确的测定可用此法。

三仪器与器材可见光分光光度计、水浴锅、分析天平、振荡机（器）、漏斗、试管架、具塞三角瓶（100ml）容量瓶（250 ml、500 ml、1000 ml）、刻度吸管（1.0 ml 2.0 ml 5.0 ml）试管（1.5cmX15cm）。

四试剂

1、双缩脲试剂称取硫酸铜（CUSO4·5H2O）1.5g，酒石酸钾钠（）6.0g，分别用250 ml蒸馏水溶解后，一并转入1000 m l容量瓶中，在搅拌下（可用旋涡混合器或摇动）加入30 ml10%(质量分数)NaOH溶液，然后用蒸馏水稀释至刻度（1000ml）。将该试剂贮存于塑料瓶或内壁涂以石蜡的瓶内。此试剂可长期保存（须无红色或黑色沉淀出现），长期使用。

2、0.05 ml/L的NaOH（需标定）。

3、标准酪蛋白溶液准确称取0.5 g酪蛋白（干酪素）溶于0.05 ml/L的NaOH溶液中，并定容于100ml，即为5mg/L的标准溶液。

4、未知蛋白质溶液浓度应在1—10mg/L范围内。可根据条件选用小麦粉或家畜血清，后者需用水稀释10倍，置于冰箱保存备用。

五方法与步骤

1、标准曲线的绘制取12支试管分两组，分别加入0. 0ml、0.2 ml、0.4 ml、0.6 ml、

0.8ml、1.0ml的标准蛋白质溶液，然后分别加入1.0ml、0.8ml、0.6 ml、0.4 ml、、0.2 ml、0 .0ml蒸馏水，使每支试管总液量为1.0ml，最后分别加入4 ml双缩脲试剂。充分摇匀后，室温下（20—25℃）放置30min，于540nm处进行比色测定，用未加蛋白质溶液的第一支试管作为空白对照液，并取两组测定的平均值。以蛋白质的含量作为横坐标，光吸收值为纵坐标绘制标准曲线。标准曲线绘制操作表见下。（共12支管，分两组，只列出一组。）

2、样品测定

（1）小麦样品的制备与测定 ①将磨碎过100目筛的小麦样品在80℃下烘至恒重，取出置于干燥器中冷却待用。②称取烘干样品约0.2g两份，分别放入两个干燥的三角瓶中。然后各瓶加入5 ml0.05 ml/L的NaOH溶液湿润，之后再加入场20 ml的双缩脲试剂（为什么？）振荡15 min，室温静置反应30min，分别过滤（为什么？），取滤液在540nm波长处比色，在标准曲线上查出相应的蛋白质含量（mg）（为什么？）。

（2）家畜血清样品的制备与测定 ①对动物空腹采静脉血，不加抗凝剂（为什么？）在室温与待自行凝固（5--10 min），通常经3h，血块收缩析出血清。析出血清后及时分离之，以防溶血，并稀释10倍置于冰霜保存。②取两份血清，每份1.0ml，分别加入4 ml双缩脲试剂，摇匀，37℃（为什么？），20 min后用分光光度计于540nm波长处比色，在标准曲线上查出相应的蛋白质含量。

（3）每次测定中须用空白管调零。六结果处理

从标准曲线上查得的蛋白质含量（mg）

样品蛋白质（%）=—————————————————X100X酪蛋白的纯度样品重（mg）

测定管光密度 100 测定管光密度

被测血清总蛋白质（g/100ml）=———————X0.05 X———=———————X5 标准管光密度 0 .1 标准管光密度

七注意事项

1、三角瓶一定要干燥，勿使样品（小麦粉）粘在瓶壁上。

2、若用小牛血清（BSA）蛋白质含量（mg/ml）应以1mg/ml的A540（540nm波长吸光

度）为0.66来校正其纯度。 3、测定管与第6管操作同。八思考题

1、分光光度法基本原理是什么？

2、双缩脲测定蛋白质含量的原理是什么？ 3、为什么双缩脲法简便、快速而准确性不高？

热心网友时间：2022-06-20 01:41